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細(xì)胞培養(yǎng)的污染來源及鑒別

2010/4/9 [2136]

一、污染來源

  細(xì)胞培養(yǎng)過程中污染的來源主要有以下幾條途徑:

  1、不潔的動物組織標(biāo)本

  很多動物組織本該是無菌的(直接與外界相通的呼吸道和消化道、泌尿系統(tǒng)除外),但由于取材時不小心也會有污染的機(jī)會。組織本身含有細(xì)菌,如取材時不用濃的抗生素洗液洗滌浸泡,也會帶菌,造成細(xì)胞污染。

  2、空氣

  空氣中含有大量的微生物,如果操作室與外界隔離不嚴(yán)或消毒不充分下,很容易造成污染。另外,凈化工作臺使用過久,濾板未定期更換或長久不更換,濾氣受塵埃堵塞,工作時不帶口罩或外界氣流過強(qiáng),污染空氣進(jìn)入操作區(qū),也會導(dǎo)致污染。春夏季南方地區(qū)多雨,空氣濕度大,含菌量多,工作不注意也易造成污染。

  3、清洗消毒

  培養(yǎng)用物品、材料洗刷不凈,培養(yǎng)用液和器材滅菌不*也會引入微生物和有毒物質(zhì)。

  4、操作

  來自操作者的污染主要有以下幾方面:

  (1)器材和溶液使用前未仔細(xì)檢查是否污染過,或者是否已經(jīng)消毒滅菌處理過,或者雖經(jīng)處理,時隔已久又末重新處理。

  (2)操作者未戴口罩、帽子,呼出氣中排出細(xì)菌和支原體。

  (3)培養(yǎng)瓶口未用75%酒精擦和燒灼。

  (4)操作者不當(dāng)心,動作不正確而將吸管或無菌器具碰到了污染的物品,如手上皮膚和瓶子外壁等。

  (5)操作者操作時大聲說話,來回走動揚(yáng)起灰塵等。

  5、血清

  市售血清滅菌不*,潛在病毒和支原體污染。

  二、污染的鑒別

  1、細(xì)菌、真菌污染的檢測

  (1)肉眼觀察細(xì)菌、真菌污染常在傳代、換液、加樣等開放性操作之后發(fā)生,而且增生迅速,若有污染,在48小時內(nèi)可明顯觀察到。如培養(yǎng)液變混濁,或略加振蕩有很多漂浮物漂起。

  (2)鏡下觀察在倒置顯微鏡的高倍鏡下可見培養(yǎng)液中有大量圓球狀顆粒漂浮,即為細(xì)菌污染。若細(xì)胞之間有絲狀、管狀、樹枝狀或卵形的物質(zhì)常為真菌污染。

  (3)接種觀察采用普通肉湯接種或用未加雙抗藥物的培養(yǎng)液接種,也可發(fā)現(xiàn)是否有污染。

  2、支原體污染的檢測

  (1)相差顯微鏡觀察將細(xì)胞接種于事先放置于培養(yǎng)瓶內(nèi)的支持物(一般用長形蓋玻片),24小時后用清潔塵鑷子從培養(yǎng)瓶中取出支持物,細(xì)胞面向上放置于載物片上,再蓋上較大蓋玻片,用相差油鏡觀察;若不用支持物培養(yǎng)法,直接取少許培養(yǎng)液滴在載物片上,再蓋上蓋片觀察亦可。支原體在鏡下呈暗色微小顆粒,多位于細(xì)胞與細(xì)胞之間,有時可見類似于布朗運(yùn)動的表現(xiàn)。應(yīng)注意與細(xì)胞破碎溢出的內(nèi)容物如線粒體等相區(qū)別。

  (2)低漲處理地衣紅染色觀察取已在培養(yǎng)瓶中的支持物蓋片或培養(yǎng)液,用新鮮配制的0.5%枸椽酸溶液處理蓋片細(xì)胞。用新配制的Carnoy液固定兩次,每次10分鐘,取出蓋片涼干。用培養(yǎng)液時,先吸取1mL,500~800r/min離心5分鐘后去除上清,留0.2mL,將0.5%枸椽酸溶液加入其中,置10分鐘,加入Carnoy液固定,離心棄上清固定液,余0.2mL沉淀物,制成2~3張涂片。然后用2%醋酸依地紅(地衣紅2g,冰醋酸60mL,加蒸餾水至100mL)染5分鐘。純酒精過三次,每次1分鐘,封入Euparal或樹膠中。若染色過深,可先用75%酒精脫色,再封片。鏡下觀察見支原體呈暗紫色小點(diǎn),位于細(xì)胞外或細(xì)胞之間。

  (3)熒光染色法觀察用熒光染料Hoechst33258,此染料能與DNA特異地結(jié)合,可使支原體內(nèi)的DNA著色,然后用熒光顯微鏡觀察。染色方法為:用支持物蓋片培養(yǎng)法將細(xì)胞接種在蓋片上,在細(xì)胞匯合前(即未長滿前)取出玻片,于碟皿中,用不含酚紅的Hanks液漂洗,1:3醋酸鉀固定10分鐘,再用生理鹽水漂洗后置于50μg/mL的Hoechst33258(生理鹽水配制)中染色10分鐘,置于蒸餾水漂洗1~2分鐘,向細(xì)胞面滴加數(shù)滴pH5.5磷酸緩沖液,然后置熒光顯微鏡下觀察。若用細(xì)胞培養(yǎng)液,先離心去除上清液,再加入Hanks液漂洗,離心棄上清后加入1:3醋酸甲醇固定10分鐘,再用生理鹽水漂洗后去上清液,再用Hoechst33258染色10分鐘,加入蒸餾水漂洗,離心去上清蒸餾水,加3~5滴pH5.5磷酸緩沖液,稍吹打使沉淀細(xì)胞重懸浮,用吸管吸出,滴于載物片上,蓋上蓋片后觀察。熒光顯微鏡下支原體呈綠色小點(diǎn),散在于細(xì)胞周圍或附于細(xì)胞表面。

  (4)電鏡檢測若條件許可,可用掃描電鏡或透射電鏡觀察。一般在細(xì)胞培養(yǎng)48~72小時,細(xì)胞接近匯合前,用胰酶消化細(xì)胞制成細(xì)胞懸液后進(jìn)行。需經(jīng)過固定、包埋、切片后才能進(jìn)行觀察。詳細(xì)方法同細(xì)胞形態(tài)觀察法(見第九章)。

  (5)培養(yǎng)檢測將2.5×109/L細(xì)胞懸液5mL加入45mL支原體肉湯培養(yǎng)基(Sigma或北京生物制品所生產(chǎn)的均可),培養(yǎng)14天后觀察肉湯培養(yǎng)有無霧狀沉淀,然后取0.5ml加入已冷卻到50℃的培養(yǎng)基中,再用瓊脂培養(yǎng)基做分離培養(yǎng),37℃培養(yǎng)3天觀察有無“荷包蛋”菌落出現(xiàn)。細(xì)胞培養(yǎng)污染

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